Частота дыхания у крыс

Для измерения ректальной температуры тела животных обычный ртутный или электронный градусник, смазанный любой нераздражающей мазью или маслом, вводится через анус в прямую кишку на глубину 5- 10 мм (до «плечиков» градусника) на 3-5 мин. (пока не прекратится повышение показателя). Не забудьте изначально встряхнуть градусник до низких значений!

Для подсчета частоты пульса необходимо приложить фонендоскоп или ладонь с левой стороны на грудную клетку сразу за грудной конечностью или прижать пальцами бедренную артерию с внутренней стороны бедра в легко находимом межмышечном желобе. Удобней производить подсчет за 10 сек., затем умножить показатель на 6.

Частоту дыхания можно установить, подсчитывая число вдохов или выдохов в течение одной минуты по движению грудной клетки и живота, по движению крыльев носа или путем прикладывания ладони к грудной клетке.

Ректальная температура тела, °С (в покое)

Крупные и средние породы собак 38,3-38,5

Мелкие породы собак 38,5-38,8

Щенки до 6 мес. 38,8-39,5

Частота дыхания, вздохов в минуту (в покое)

Частота пульса, ударов в минуту (в покое)

Крупные породы собак 70-110

Средние породы собак 80-130

Мелкие породы собак 90-160

Щенки 2-6 мес. 170-200

* — может повышаться на 0,5-1°С при яйцекладке, во время линьки и полового созревания

** — в жаркое время может повышаться до 40-41°С

Источник

Крыса. Рекомендации по содержанию, уходу и кормлению крыс.

Крысы всегда будут излюбленными животными для домашнего содержания из-за своей интеллигентности и дружелюбного поведения. Существуют различные окраски: кремовый, молочный, цвет шампанского с светло- или темно-красными глазами, пегие крысы с черными глазами и причудливо-пятнистым черно-белым или бело-коричневым мехом, чепрачные крысы с темной головой и полосой вдоль спины.

Анатомические и физиологические особенности крыс

Крысы всеядны. Желудок разделяется на 2 половины складкой, поэтому у крыс не бывает рвоты.

Рядом с органами зрения находятся так называемые Хардершевы железы. Они продуцируют красноватый секрет. Корочки в этой области указывают на уменьшение чистоплотности крысы и т. о. могут свидетельствовать об ухудшении самочувствия или старческих проблемах.

• Вес тела: 250—300 г (самки), 350—500 г (самцы).
• Температура тела: 37-39,5°С.
• Дыхание: 70-110 дыхательных движений в минуту.
• Пульс: 250—400 ударов в минуту.
• Половозрелость: 6 недель.
• Частота течки и длительность цикла: круглогодично с длительностью цикла 4—5 дней. После родов новый цикл начинается через 24 часа.
• Длительность беременности: 21-23 дня.
• Возраст отъема: 3 недели.

Содержание, уход и кормление крыс

Крысы — исключительно интеллигентные животные. Чем больше раздражителей и побудителей из окружающей среды они получают в юности, тем устойчивее становятся к стрессам. Крыса рассматривает клетку как свой собственный участок и поэтому должна уже в детстве содержаться в паре или группе. Чтобы посадить вместе двух взрослых животных, особенно выросших самцов, нужно предоставить им новую клетку, иначе старожил будет защищать свою территорию до крови.

Клетка должна быть сделана из легко моющегося искусственного материала с нержавеющей решеткой. Деревянный или пластиковый домик с небольшим входным отверстием подходит в качестве укрытия и спальни. Колеса для бега не подходят крысам, поскольку строение тела крысы не предусмотрено для бега с таким изгибом позвоночника, и к тому же легко прищемить длинный хвост. Толстый слой подстилки из непыляшего материала типа тонкой древесной стружки, целлюлозы, бумаги или грубых опилок будет с удовольствием использован как убежище. Излюбленными являются также пластиковые и бумажные трубки (например, из строймагазина), различные игрушки и приспособления для лазания.

Альбиносы (чисто белые крысы со светло-красными органами зрения) особенно чувствительны к ультрафиолетовому излучению. Слепота вследствие слишком сильного или долгого облучения отнюдь не редкость!

Хотя крысы активны ночью, можно побудить их к дневной активности путем кормления в течение дня. Как всеядное, крыса ежедневно нуждается примерно в 15—20 г корма. Он должен содержать в среднем 25% сырого белка, 45% углеводов и 8% жира. Наряду с комбикормами (имеющиеся в продаже готовые смеси) в качестве сочного корма подходят плоды и зелень. Травяной корм следует собирать в экологически чистых местах (не вдоль улиц или железных дорог), хорошо промывать и просушивать (влажный корм быстро плесневеет и может привести к проблемам пищеварения).

Дополнительно можно предложить сено, сухари, все виды зерна, семечки подсолнечника и тыквы, орехи, печенье для собак, картофель, лапшу, для восполнения потребности в белке — отварное мясо, печень, рыбу, мучных червей и вареные яйца. Крысы склонны к набиранию излишнего веса. Поэтому, чтобы предотвратить нанесение вреда здоровью животного ожирением, важны сбалансированное питание и обилие движения. Питьевая вода по гигиеническим соображениям должна находиться в бутылочке, а не в миске. Крысе необходимо примерно 10% собственного веса воды в день.

Избыточный вес у крыс

Крысы очень склонны к ожирению. Это ведет к проблемам с кровообращением, особенно при экстремальных температурных режимах, и уменьшает плодовитость.

Мероприятия: меньше концентрированных кормов, низкокалорийные лакомства (без сахара, жира — см. состав на упаковке). Предоставить возможность активного движения.

Старение крыс

Темные красно-коричневые отложения вокруг глаз, выпадение волос и чешуйки оранжевого цвета в шерстном покрове являются типичными для крыс проявлениями старения.

С 15 месяца жизни появляются признаки старения в виде проблем с зубами и работой сердца, заболевания печени и почек. Симптоматически это проявляется обычно в виде взъерошенного волоса, обезвоживания, склеившихся век и расстройств вестибулярного аппарата.

Терапевтически можно помочь, облегчая борьбу с отдельными симптомами за счет диетического сбалансированного кормления и достаточного обеспечения витаминами.

Искусственное вскармливание крыс

При заболевании или поведенческих расстройствах самки можно попытаться вырастить малышей самостоятельно. На первой ступени важным является источник красного света или теплая подушка как источник тепла. Крысиное молоко включает 9,7% белка, 13% жира и 3,2% молочного сахара. В качестве заменителя молока можно использовать смесь 100 мл сливок для кофе и яичного белка от яйца средней величины. Когда молодняк начнет питаться самостоятельно, можно подмешивать к заменителю молока отварной картофель, зелень или готовое детское питание, кормить следует до тех пор, пока животные не начнут самостоятельно поедать корм для взрослых.

Источник

Частота дыхательных движений в доклинических исследованиях

М.Н. Макарова, доктор медицинских наук, директор,
Д.В. Шубин, менеджер по качеству,
В.Г. Макаров, доктор медицинских наук, профессор

НПО «Дом Фармации»,

188663, Российская Федерация, Ленинградская обл., Всеволожский район, г.п. Кузьмоловский, ул. Заводская, д. 3, к. 245

Резюме

Исследование функции внешнего дыхания у лабораторных животных — частая задача при изучении токсичности лекарственных средств, для оценки фармакологической безопасности, при изучении фармакодинамики.

При этом неизбежно возникает вопрос о нормальных значениях частоты дыхательных движений (ЧДД) у здоровых животных. Цель данного исследования — оценка частоты дыхательных движений у таких популярных для доклинических исследований видов лабораторных животных, как мышь (n=10♀, n=10♂), крыса (n=20♀, n=20♂), морская свинка (n=20♀, n=20♂), кролик (n=20♀, n=20♂), и сравнение указанных показателей с данными литературы.

У всех животных сначала измеряли ЧДД без наркотизации, затем этим животным вводили наркоз и повторно проводили измерения.

В дополнительных группах животных также, было оценено влияние приучения кроликов к процедуре измерения (на протяжении 2 нед) (n=5♀, n=5♂) и определена ЧДД у молодых кроликов (n=5♀, n=5♂).

Показатели ЧДД у мышей совпали с указанными в литературе и составили 200–283 в минуту. При этом данные, полученные на ненаркотизированных животных, оказались статистически выше.

Показатели ЧДД у крыс в наркозе и без наркоза совпали с данным литературы и составили 91–106 в минуту. У самок ЧДД при использовании наркоза оказалось статистически значимо ниже, чем у самцов.

У морских свинок показатели ЧДД полностью совпали с данными литературы (89–120 в минуту), после наркоза и у самцов и у самок ЧДД урежалась. Среди изученных видов животных этот вид наиболее подходил для снятия показаний ЧДД без использования наркоза.

При анализе данных, полученных на кроликах, мы обратили внимание на крайне низкую величину ЧДД у кроликов в покое, описанную в справочной ветеринарной литературе и в ряде экспериментальных работ приводится значение 30–80 в минуту. ПО результатам других экспериментальных работ этот показатель у интактных самок кроликов составлял 120–200 в минуту. Нам удалось зарегистрировать относительно низкие значения ЧДД только у самцов кроликов в наркозе (79±9). У кроликов самцов без наркоза этот показатель составил 302±19 в минуту, у самок без наркоза было установлено ЧДД 441±13, а в наркозе ЧДД урежается до 233±29 в минуту.

Мы предположили, что кролики, перед проведением манипуляции нуждаются в приучении к процедуре измерения, и в течение 2 нед приучали их. Также проводилось измерение ЧДД у молодых кроликов.

В результате приучения животных к процедуре измерения ЧДД снижается у самцов кроликов в сознании до 224±17, у самок кроликов — до 163±9.

Регистрация ЧДД у более молодых животных, в возрасте 8–9 мес, также влияет на показатель ЧДД; он составил 157±23 и 114±11 у самцов и самок соответственно, и был ниже, чем у животных более взрослого возраста (12–14 нед).

Проведенное исследование позволило нам сформулировать некоторые практические рекомендации по измерению ЧДД у лабораторных животных.

Введение

Исследование функции внешнего дыхания у лабораторных животных – частая задача, как при изучении токсичности лекарственных средств, для оценки фармакологической безопасности, так и при изучении фармакодинамики. Оценка функции внешнего дыхания также очень важна при доклиническом изучении ингаляционных средств.

Оценка частоты дыхательных движений (ЧДД) позволяет дифференцировать сенсорные раздражители верхних дыхательных путей и «легочные» раздражители. Такие раздражители, как аммиак, хлор и формальдегид вызывают раздражение верхних дыхательных путей, а такие, как диоксид азота и озон, вызывают раздражение легких. Раздражители верхних дыхательных путей, как правило, вызывают замедление частоты дыхания, в то время как легочные раздражители обычно увеличивают частоту дыхания и уменьшают минутный объем, обеспечивая быстрое и неглубокое дыхание [1].

При этом неизбежно возникает вопрос: каковы нормальные значения показателей функции внешнего дыхания, в частности частоты дыхательных движений у здоровых животных? ЧДД – достаточно вариативный показатель, который зависит не только от вида, пола и возраста животного.

У здоровых животных на частоту дыхания оказывают влияние многие факторы: днем ЧДД больше, чем ночью в покое; молодые животные и животные небольшого размера дышат чаще взрослых и крупных. Учащение дыхания наблюдается во время движения, кормления, пересадки животных, при контакте с незнакомыми объектами, при изменении температуры воздуха в помещении, наличии каких-либо стрессогенных воздействий. Снижение частоты дыхательных движений чаще всего наблюдается под влиянием средств для наркоза, или других лекарственных средств, способных угнетать дыхательный центр, при некоторых заболеваниях головного мозга.

Нормальные показатели ЧДД, указанные в литературных источниках, крайне противоречивы, особенно это касается кроликов и морских свинок, которые реже, чем мыши и крысы, выступают в качестве тест-систем.

Цель данного исследования – оценка частоты дыхательных движений у наиболее часто используемых в доклинических исследованиях видов лабораторных животных (мышь, крыса, морская свинка, кролик).

Материал и методы

Эксперименты были выполнены на аутбредных мышах – 10 самцов и 10 самок (возраст 8–9 нед), аутбредных крысах – 20 самцов и 20 самок (возраст 10–11 нед), морских свинках – 20 самцов и 20 самок (возраст 9–10 нед), кроликах породы Новозеландские – 25 самцов и 25 самок (возраст 12–14 нед) и 5 самцов и 5 самок (возраст 8–9 нед). Все животные получены из питомника АО НПО «Дом Фармации», Россия). Животных содержали в условиях 24-часового фоторежима (12 ч день:12 ч ночь, включение света в 8:00), при контролируемой температуре (20±2ºC) и влажности (65±10%) воздуха и свободном доступе к очищенной воде и стандартному корму (гранулированный комбикорм).

Данная научно-исследовательская работа была рассмотрена на биоэтической комиссии НПО «Дом Фармации», одобрена для проведения (№БЭК 1.58/17 от 08 августа 2017 г.), и выполнена в соответствии с рекомендациями Директивы 2010/63/EU Европейского Парламента и Совета Европейского Союза от 22 сентября 2010 года по охране животных и политикой национальных институтов здоровья США «Принципы лабораторного ухода за животными». Исследование соответствовало принципам 3 «R» (Reduction, Refinement and Replacement). Все усилия были направлены на минимизацию страданий животных и сокращение их числа для эксперимента. Эвтаназия животных дизайном исследования не была предусмотрена.

У всех животных сначала проводилось измерение ЧДД без наркотизации, в нескольких сериях, а затем эти же животные вводились в наркоз: крысы, морские свинки и кролики – Золетил 100/0,25 мл + Ксилазин/0,5 мл, мыши – Золетил 100/0,050 мл + Ксилазин/0,1 мл. После наркотизации повторно проводились измерения в нескольких сериях. После измерений животные возвращались в стоковую популяцию питомника. Кролики после измерений также возвращались в стоковую популяцию питомника и там, в комнате проживания, на протяжении 2 нед подвергались приучению к процедуре регистрации ЧДД: им навешивали датчик, помещали на рабочую поверхность и проводили регистрацию ЧДД без сохранения данных.

Для регистрации использовали регистратор PowerLab® 8/30 (ADINSTRUMENTS, Австралия) и пьезокерамический датчик для регистрации ЧДД с разъемом типа BNC для подключения к регистратору, эластичную манжету для фиксации датчика (разных типоразмеров в зависимости от вида животного). Для анализа данных использовали программное обеспечение LabChart.

Результаты и обсуждение

Полученные результаты представлены в табл. 1.

Частота дыхательных движений у различных видов животных в сравнении с данными, указанными в литературе

Источник