Навеки уснуть, это только от хлороформа( при передозе), а от эфира ничего не случится. Чуть уснула сразу на стол, в ходе операции на морду ватку с эфиром и в путь. Но с эфиром довольно не удобно работать, хлопотно. Рекомендую калипсол, ширнул животное i/p и через минуту в работу. Красота. )
Сообщение было отредактировано M/D/A — 29.08.2005 11:33
Berejnoy Участник Miami, FL
С ума все посходили, однако. в эксикаторе наркоз давать. Нет, ну можно конечно, но зачем?! Оптимально давать инъекционный кетамином или теперешним золетилом. Если нужен ингаляционный наркоз, то вообще лучше бы взять изофлюран — надежнее и безопаснее. Дорого. Если в лабе есть эфир и заморачиваться совершенно не охота, то обычно поступают следующим образом: берут 50-ти кубовую нанку (пробирку, ессно) и кладут туда кусочек ватки, далее отрезают от перчатки (резиновой, ессно) палец, натягивают на пробирку вместо крышки и меряют на крысиную голову. Обрезают кончик так, чтобы у крысы из резиновой кишки только нос торчал. Вот и все. Капнули на вату эфира, запихали крысиную голову в пробирку, резина держит ингалят как маска и через 3 минуты все счастливы :)) Дозировать все довольно просто — отрубилась крыса — чуть вытянули голову из кишки, начала дергаться — засунули обратно.
Nuken Участник
Почему именно эфир? Крысу нужно убить наркозом или. Я работал так: 40 мг этаминал натрия на 1 кг живого веса. Вводил внутрибрюшинно, через минут 5 уже была готова. Советую расчитывать так, чтобы объем инъецированного раствора не превышал 1 мл. Хватает на пару часов. Можно догонять, но осторожно. Самки обычно более восприимчивы к наркозу, чем самцы. С самим наркозом будьте внимательны, так как некачественое/просроченое наркотическое вещество дает побочные эффекты вплоть до гибели животного :-(. Советую почитать книгу о лабораторных животных, там есть соотв. раздел да и в конце обычно идет дозировка для различных лекарственных средств, там же летальные дозы должны быть ;-). Западнюк очень даже ничего. Какие операции делать будете? Брюшная полость или неполостные? Удачи!
Сообщение было отредактировано Nuken — 30.08.2005 14:35
L-2M Постоянный участник
Nuken, а где Вы этаминал берете, если не секрет? Его же уже вроде с производства сняли — а жаль, хорошая штука (сами пользуем остатки со старых добрых времен).
Эфиром, в принципе, можно; но, как совершенно резонно здесь замечали, только если осторожно. Мы ватку на мордочку ложили — но очень понравилось приспособление, описанное Berejnoy (спасибо). Кое-кто из знакомых пользуется тиопенталом, но дозировки не скажу — не помню.
Сообщение было отредактировано L^2M — 30.08.2005 20:27
Piter- Постоянный участник
Ползовался когдато. Надо переспросить коллег. Я свои протоколы старые похерил. Помоему в «лабораторных жывотных» описоно это. http://www.molbiol.ru/forums/lofiversion/i. php/t4656.html Под тиопенталовым наркозом (50 мг/кг)
Nuken Участник
Сначала мы растворяли таблетки, но они были просроченные и давали отек легких. А потом из загашника вытащили баночку с порошком (осталась с добрых советских времен) и были счастливы. и мы и крысы. Почему в таблетках этаминал натрия был плохим, а в порошке нормальным в смысле наличия/отсутствия побочных реакций, сказать не могу, возможно, чистый хранится дольше. Так почему именно эфиром надо наркотизировать? Что с животным дальше делать будете. Оперировать или что? Подбор наркоза зависит от приследуемой цели.
Batareykin Постоянный участник пожизненный ЭЦИХ с гвоздями
Общая анестезия (наркоз по русски) бывает разная.
Вам тут про медикаментозную расказывают — ингаляционный и инъекционный варианты, а вообще есть и другие методики:
— холодовой наркоз (это если крысят нужно наркотизировать) — наркоз гипоксией (этот метод приветствуется далеко не всеми правилами работы с животинами) — наркоз через вживленные электроды (енто очень дорогостояще по времени, смертности и.т.д.) — комбинированные варианты вышеперечисленного
Ну и конечно, никто не отменял всеми любимый рауш-наркоз :[
Guest IP-штамп: fr.x6lct0Nsto гость
Отрезается верх пластиковой бутылки (от крышки 2 см). Внутрь помещается ватка, например, с эфиром. Это приспособление на мордочку. Но не переборщить. У нас первый блин комом был. Померла несчастная от передозировки. Но потом, как по маслу пошло. Все прекрасно отошли от наркоза и исцелились.
AVP Постоянный участник New Jersey
Proc Soc Exp Biol Med. 1952 Apr;79(4):658-60. A method of positive pressure anesthesia for the rat. LORING WE.
Exp Anim. 2003 Jul;52(4):349-51. A new method of inhalation anesthesia with nasopharyngeal insufflation in rat experiment. Yamasaki K, Kuroe K, Kamimura R.
World J Gastroenterol 2004;10(10):1526-1527 Rat liver transplantation without preservation of “phrenic ring” using double cuff method. Yong Jiang, Yu-Dong Qiu, Xiao-Ping Gu, Xin-Hua Zhu, Yi-Tao Ding
Сообщение было отредактировано AVP — 03.10.2005 17:41
Comrad600 Участник
Колоть надо, Сагаталом. Они все хорошо засыпают и отлично просыпаются
Mitarbeiter
Возможно здесь может находиться интересующая Вас информация под www.ivis.org Если понадобиться сначала зарегистрироваться, советую это сделать — проблем не будет и в будущем регулярно будете проинформированы о всех новостях в лабораторном животноводстве и общей ветеринарии.
Успехов
In: Laboratory Animal Medicine and Management, Reuter J.D. and Suckow M.A. (Eds.) International Veterinary Information Service, Ithaca NY, 2004; B2503.0904
Biology and Medicine of Rats (Last Updated: 29-Sep-2004) K. R. Pritchett1 and B. F. Corning2
1,2Charles River Laboratories, Inc., Wilmington, MA, USA. 1Department of Comparative Medicine, University of Washington, Seattle, WA, USA.
IV. Surgery and Anesthesia A. Anesthesia and Analgesia Fasting the rat before anesthetic administration is not necessary. Rats are unable to vomit, which limits the risk of aspiration pneumonia and have a high basal metabolic rate, which means they need to eat quite often. If rats must be fasted for intestinal surgery, it is not necessary to fast longer than six hours. Metabolic support may be provided through the use of sugar water. Never water restrict a rat, as the effects of dehydration can be severe. Rats may be anesthetized using injectable agents, or masked or intubated for the use of inhalant anesthetic agents. Injectable agents work quite well for most rat procedures. Masking a rat down is not recommended, but induction in a box usually proceeds quite smoothly. If intubation is desired for a longer procedure, the use of a 14 — 20 gauge catheter as an endotracheal tube, an otoscope, and a guide wire will facilitate that procedure. Place the rat in dorsal recumbency and open the mouth. Use the otoscope to visualize the larynx and place the guide wire in the trachea. Keep the wire in place while removing the otoscope. Thread the catheter over the guide wire and then carefully remove the guide wire. Tie the catheter, using the hub, to the lower jaw. Attach the catheter to the anesthetic machine. Due to the small tidal volume of the rat, minimization of dead space in the anesthetic circuit is extremely important.
Analgesic agents are best administered to the rat through injections. The dose may be more precisely controlled in that fashion, and the effects evaluated. Rats in pain exhibit certain characteristic behaviors. These include abdominal writhing, falling or staggering when attempting to move, remaining hunched in the cage, and back arching [13]. Evaluation of rats for these clinical signs postoperatively may indicate a need for more than perioperative analgesia. Since rats cannot vomit, nausea in rats is evinced by pica. This behavior can be injurious to the rat. Monitor rats receiving opioids closely for this behavior. Buprenorphine, although widely available, may not be suitable for use in rats as it is known to cause pica in some strains of rats, most notably Sprague-Dawley rats.
Fentanyl Butorphanol 0.4 mg/kg SQ Fentanyl Naloxone 0.01 — 0.1 mg/kg IV, IM, IP Xylazine, Medetomidine Atipamizole 1 mg/kg SQ None specifically Doxapram 5 — 10 mg/kg IM, IV, IP
Acetaminophen 110 — 305 mg/kg IP, PO Aspirin 100 mg/kg PO Buprenorphine* 0.05 — 0.10 mg/kg SC, IV BID Butorphanol 2 mg/kg SC q 4 hours Carprofen 5 mg/kg SC Flunixin meglumine 2.5 mg/kg SC, IM BID Ketoprofen 5 mg/kg SC Morphine 2.5 mg/kg SC q 2 — 4 hours 1 — 4 mg/kg IV q 2 — 4 hours * May cause pica in some strains of rat.
Источник
Общая анестезия грызунов (практический опыт)
Растущая популярность содержания грызунов в последнее время вынуждает ветеринарных врачей осваивать необходимые технологии диагностики и лечения этих животных. Хирургические вмешательства и болезненные процедуры у грызунов часто требуют адекватного обезболивания.
Невозможно обеспечить достойный уровень ветеринарной помощи грызунам без качественной общей анестезии. В течение нескольких лет мы отрабатывали различные методики анестезии грызунов. Это было особенно сложно в свете действующих ограничений на использование наркотических и психотропных препаратов в ветеринарии. Конечно, очень удобно наркотизировать грызуна кетамином, но. увы.
На сегодняшний день нами отработана довольно эффективная и надежная схема анестезии крыс и морских свинок.
Мы применяем двухкомпонентный наркоз:
1. Внутримышечно или подкожно вводим ксилазин 20 мг/кг (0,1 мл/100 г веса животного). Через 10-15 минут можно переходить ко второму этапу.
2. Внутривенно вводим пропофол (диприван) 10 мг/кг (0,1 мл официнального раствора на 100 г живого веса). Вуаля!
В течение 15-30 минут после однократной инъекции пропофола можно спокойно проводить практически любые вмешательства, в т.ч. полостные, офтальмологические и ортопедические. При необходимости пропофол можно добавлять половинными дозами.
Отдельно о внутривенных инъекциях. Крыса и морская свинка — это, конечно, не доберман или ротвейлер: попадать грызунам в вену несколько сложнее, но вполне реально.
Мы пользуемся иглами — «бабочками» (scalp vein set) размер 26-27G. Пунктируем обычно подкожную вену внутренней поверхности бедра. Также доступна вена на краниальной поверхности предплечья. Многократно пытались пунктировать вены на ушах у морских свинок, — устойчивых результатов не получили. Определенные сложности возникают иногда с фиксацией животного во время внутривенной инъекции. Морские свинки, к счастью, кусаться не умеют, а крысы — напротив, могут причинить своими зубами существенный вред. Поэтому нелишне бывает завернуть переднюю часть туловища и голову крысы в плотную материю перед инъекцией.
Для удобства дозирования пропофол мы обычно разбавляем физиологическим раствором в 4-8 раз. Пропофол рекомендуем вводить медленно, наблюдая за реакцией животного. Иногда достаточно бывает1/2 — 2/3 расчетной дозы.
После инъекции иглу из вены не вынимаем и, по возможности, фиксируем для повторных инъекций.
Иногда на введение пропофола может развиться КРАТКОВРЕМЕННАЯ депрессия дыхания. В таких случаях можно несколько раз мануально форсировать движения грудной клетки. При использовании описанной схемы тяжелых анестезиологических осложнений мы не наблюдали ни разу.
Несколько слов о неудачном опыте анестезии. Внутрибрюшинная (вместо внутривенной) инъекция пропофола во многих случаях позволяет добиться необходимого уровня анестезии. Однако при таком введении очень сложно контролировать глубину и продолжительность наркоза. Вводить препарат необходимо в больших дозах (20-40 мг/кг). Также очень сильно различается время наступления анестезии (от 10 до 40 мин после инъекции). Депрессия дыхания, возникающая после внутрибрюшинной инъекции трудно поддается контролю — 2 животных у нас погибли.
Тем не менее внутрибрюшная анестезия пропофолом остается для нас основным методом при операциях у хомяков.
Будем рады узнать мнение коллег по данному вопросу, обсудить и обменяться мнениями в нашем форуме для специалистов.
Berejnoy 
