Проблемы с цнс у крыс

Болезни нервной системы

Вопреки мнениям крысы тоже подвержены различным заболеваниям. Ситуация со стабильным стрессом и неправильным питанием характерна для них также, как и для человека. Если декоративный грызун перешагнул двухлетний рубеж, то у него велик шанс развития таких болезней, как артрит лап, опухоли, проблемы дыхательных путей, а также инсульт.

Симптомы инсульта у крысы опасны потому, что они наступают внезапно и имеют быстрое развитие, а закончится могу параличем конечностей, судорогами и наступлением смерти. Мы подробнее рассмотрим данную болезнь, ее симптомы и лечение.

Описание

Инсульт у крысы говорит о нарушение мозгового кровообращения. Происходит сужение или закупорка или разрыв сосудов головного мозга и как следствие поражением его участка. Этот процесс выражается несколькими симптомами, которые зависят от площади поражения пострадавшего отдела головного мозга. Итак, ситуация является критической, если:

• крыса падает на бок без причины;
• наблюдается учащенное тяжелое дыхание;
• у животного нарушена координация движений;
• происходит кровоизлияние в глазное яблоко;
• у крысы отказывают задние лапы;
• регулярно наблюдаются мышечные спазмы;
• появление нарушений зрения;
• поведение питомца становится агрессивным, он становится подвержен стрессу.

Часто такое нарушение координации при болезни крыс воспринимается хозяином как ужасный стресс и нечто непоправимое. На самом деле крысе можно помочь и лапки могут снова начать двигаться, если вовремя распознать болезнь и принять меры.

Виды инсульта и его причины

Врачи делят инсульт у декоративных грызунов на два основных вида. Первый вид, геморрагический, подразумевает кровоизлияние непосредственно в головной мозг и признан самым серьезным нарушением мозговой деятельности. Он наступает резко и может являться последствием черепно-мозговой травмы (например, если зверь падал). Второй вид инсульта, ишемический, является следствием частичной или полной закупорки сосудов. Это тоже опасно для клеток нервной системы, поскольку некоторые из них перестают получать кислород и другие продукты метаболизма. Такое заболевание быстро приводит их к гибели. Инсульты могут и сочетаться между собой, делая состояние пациента еще более критическим.

Специалисты называют несколько причин инсультов, а также факторов, провоцирующих их развитие:

• образование тромбов;
• эмболия;
• сужение сосудов;
• травма, приводящая к разрыву капилляра;
• постоянный стресс у крысы.

Современная ветеринария позволяет лечить последствия и предотвращать развитие симптомов еще до того, как у крысы отнялись задние лапы. Ратологи назначают действенные препараты, в частности пирацетам . Конечно, лечение будет длиться не один день, но прогноз может быть и благоприятным, и зверек перестанет постоянно падать. Естественно, после лечения необходимо избегать стресса.

Здоровьем крыс занимается врач ратолог. По вопросам содержания, лечения и другой помощи обращайтесь по тел. +7 (495) 669-31-09 (Москва); +7 (812) 955-22-94 (Санкт-Петербург)

Врачи ратологи работают круглосуточно:

Услуги	Цены
Вызов ратолога составляет с 9.00 до 21.00	600р
Вызов ратолога составляет с 21.00 до 9.00	1200р
Первичный осмотр крысы	от 500р
Стоимость консультативный визита врача	до 2000р
Средняя цена визита для оказания лечебной помощи	от 2000р. до 4000р.
Средняя цена хирургических манипуляций	3000р

Обратите внимание, что визит ратолога складывается из Вызова врача, из Осмотра животного и Дополнительных лечебных мероприятий.

Источник

Проблемы с цнс у крыс

Афферентные элементы в структуре интегративной системы первыми воспринимают изменения окружающей среды или испытывают воздействие антропогенного фактора [1]. Нейроны выполняют специфические функции с участием нейропептидов. Количественные различия белкового фонда в нейронах контрольной и опытной групп могут служить доказательством внешнего воздействия на организм, а также способны быть показателем адаптивных перестроек в определенных нейронных популяциях нервной системы, что подтверждают многочисленные исследования [2, 3].

Нуклеопротеидные комплексы – показатели уровня метаболических процессов. В течение последних десятилетий многие исследователи при изучении компенсаторных возможностей нервной системы в качестве показателя уровня синтетических реакций в нервных клетках оценивали хроматофильную субстанцию [4, 5]. Общие белки в нейронах, обеспечивающие основные функции нервных клеток, многократно изучались в норме и в эксперименте [6, 7]. Нейроспецифические структурные белки, определяющие форму, размеры, пространственное положение нейронов и осуществляющие внутриклеточный транспорт веществ, очень важны при изучении модульной организации спинного мозга и при исследовании спинномозговых ганглиев [8, 9].

Представитель отряда Грызуны – Крыса белая – представляет особый интерес как основной объект в научных исследованиях при изучении экстремальных воздействий на нервную систему – алкоголя или асфиксии. Крыса серая – полуподземное синантропное животное, приближенное к жилищу человека [10]. В процессе видообразования у нее сформировался металокомоторный тип двигательных реакций: при движении основной толчок обеспечивается поясом задних конечностей, передние являются амортизационными [11]. Крыса белая – лабораторный альбинос Крысы серой с аналогичным типом локомоции, испытывает влияние клеточного содержания: искусственное освещение, увеличение светового дня, отсутствие потребности постоянного поиска пищи. У животного происходят значительные изменения нейромышечных реакций двигательного анализатора. Крысу серую и Крысу белую можно сравнивать как серую и белую расы одного вида, различающиеся средой обитания и моторикой.

Цель исследования – сравнительный анализ количественных и качественных показателей белкового фонда нейронов слоя II–III коры больших полушарий головного мозга, клеток коры мозжечка и нейронов спинномозговых ганглиев шейного и поясничного отделов спинного мозга крыс в условиях модели антропогенного воздействия: алкоголь, асфиксия, клеточное содержание.

Материалы и методы исследования

На моделях антропогенного воздействия исследовалось влияние асфиксии на нейроны коры мозжечка, влияние алкоголя – на примере клеток слоя II–III коры головного мозга, воздействие клеточного содержания – на примере клеток спинномозговых узлов белых лабораторных крыс. Вышеперечисленные нейронные популяции как центробежные элементы в структуре двигательного анализатора первыми испытывают любое внешнее воздействие. В нейронах слоя II–III коры головного мозга изучали нуклеопротеидные комплексы, в нейронах мозжечка – общие белки, в нейронах спинномозговых ганглиев исследовали нейроспецифические структурные белки. Экспериментальные группы животных состояли в среднем из 9–10 особей. У представителей контрольных групп (из 9–10 животных) забирали передний мозг, мозжечок или спинной мозг и спинномозговые ганглии от шейного и поясничного отделов. Забор животных проводили в соответствии с Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных (Приложение к приказу Министерства здравоохранения РФ от 12.08.1997 г. № 755) и рекомендациями Международного комитета по науке о лабораторных животных.

Влияние алкоголя изучали по методике В.Е. Высокогорского: перорально вводили этанол в дозах 8 г/кг и 4 г/кг массы животных (что соответствовало 2 мл и 1 мл 48%-ного раствора этанола на 100 г массы). Головной мозг у экспериментальных животных забирали через 1 час и через 1 сутки после введения алкоголя. Депарафинизированные срезы коры окрашивали тионином по Нисслю. В нейронах слоя II–III коры больших полушарий белых крыс с помощью морфометрического анализа исследовали нуклеопротеидные комплексы по степени хромофилии.

Экспериментальную модель асфиксии создавали путем пережатия интубационной трубки в течение 7 минут с последующим оживлением. Общие белки в клетках коры мозжечка изучали с помощью интерферометрии. Анализировали показатели белкового фонда (содержание и концентрацию) после асфиксии в остром периоде, через 1 час и через 1 сутки.

Влияние условий клеточного содержания на нервную систему животных изучалось на примере нейронов спинномозговых ганглиев шейного и поясничного отделов спинного мозга у представителей одного вида, различающихся средой обитания и двигательными реакциями. В качестве контрольной группы рассматривали синантропное животное – Крысу серую, адаптированную в процессе видообразования к полуподземному образу жизни. В качестве опытной группы изучали Крысу белую лабораторную – альбиноса Крысы серой, которая содержалась в клеточных условиях. Крысы серые были набраны в жилой зоне города Омска. Структурные белки в нейронах выявляли гистохимической реакцией с амидочерным 10Б. Содержание структурных белков и их концентрацию (т.е. среднее количество белка в одном пикселе) в клетках определяли цитофотометрией с применением системы анализа «Видео Тест Морфо-4» (Санкт-Петербург, 1999). Содержание (или массу) структурных белков в нейронах (цитофотометрические показатели интегральной оптической плотности белков, представляющие сумму локальных плотностей в клетках) условно обозначали в пикограммах. Среднюю оптическую плотность – средний показатель оптической плотности белков в 1 пикселе – расценивали как показатель концентрации структурных белков в нейронах.

Для оценки функционального уровня нейронов вычисляли функциональный ядерно-цитоплазматический коэффициент как соотношение содержания белков в ядре к содержанию белков в цитоплазме. Регуляторный уровень (регуляторный ядерно-цитоплазматический коэффициент) в нейронах ганглиев рассчитывали как соотношение концентрации белков в ядре к концентрации белков в цитоплазме. Показатели в тексте представлены как среднее значение ±среднеквадратичное отклонение.

Различия количественных показателей белков в нейронах мозжечка и результаты нуклеопротеидных комплексов в нейронах коры больших полушарий мозга обрабатывали параметрически, с применением критерия Стьюдента. Анализ на нормальность распределения показателей концентрации и содержания структурных белков в нейронах спинномозговых ганглиев проводили по критерию Колмогорова–Смирнова. Различия по каждому признаку в нейронах ганглиев серых и белых крыс выявляли с помощью дисперсионного анализа ANOVA (Краскела–Уоллиса). Взаимосвязи между цитохимическими показателями белкового фонда структурных белков у каждого животного определяли внутривидовым корреляционным анализом по Спирмену. Статистическую обработку количественных данных проводили по программам Excel и «Статистика-6».

Результаты исследования и их обсуждение

В процессе изучения компенсаторных явлений нервной системы при воздействии этанола 1-й группе лабораторных белых крыс вводили алкоголь из расчета 8 г/кг массы. При этом в нейронной популяции слоя II–III коры переднего мозга в сравнении с контролем отмечалось достоверное увеличение нейронов с явлениями хроматолиза цитоплазмы различной степени до появления клеток-теней. Количество клеток-теней возросло с 2,7% (в контроле) до 7,3% (в опыте) (Р≤0,01). Наблюдаемую крайнюю степень хроматолиза цитоплазмы (клетки-тени) мы относили к необратимым явлениям максимального снижения синтетических процессов и к истощению нейроцитов.

В нейронах коры больших полушарий экспериментальных животных 2-й группы под влиянием небольшой дозы алкоголя (4 г/кг массы) сохранялись явления хроматолиза, но выражены они в меньшей степени. Нарастало количество гиперхромных клеток. Компенсаторные проявления нейронов были связаны с увеличением в них размеров ядра и ядрышка. Количество гиперхромных клеток от общего числа составило 10,3% (в контрольной группе – 6,0%). Это происходило за счет уменьшения нейронов с гипохромной цитоплазмой. Подобные изменения, вероятно, обусловлены резким повышением уровня метаболических реакций. Они отражают обратимость нарушений в нейронах в ответ на воздействие этанола и выявляют определенный уровень компенсаторных возможностей клеток нейронной популяции слоя II–III коры полушарий головного мозга.

Асфиксию белых крыс с последующим оживлением проводили путем пережатия интубационной трубки. На заданных сроках в остром периоде после декапитации у животных забирали мозжечок. В латеральных участках полушарий мозжечка исследовались нейроны коры молекулярного слоя: малые звездчатые клетки, корзинчатые клетки; в ганглиозном слое – клетки Пуркинье; в зубчатом ядре – нейроциты больших и средних размеров. Интерферометрическое исследование звездчатых нейронов молекулярного слоя на ранних этапах после оживления показало достоверное увеличение показателей концентрации белков: через 1 час – до 1,29 пг/мкм 3 , что на 26,7% выше нормы; через 1 сутки – до 1,42 пг/мкм 3 , что на 39,2% больше, чем в контроле. В клетках Пуркинье ганглиозного слоя через 1 час после оживления содержание и концентрация общих белков в цитоплазме повышались и максимального значения достигли через сутки: концентрация составила 1,56 пг/мкм 3 (Р≤ 0,001), что на 26,9% выше, чем в контроле, а содержание белков увеличилось на 35,5%. В нейронах зубчатого ядра на ранних сроках постреанимационного периода изменения концентрации и содержания белков были сходны с изменениями нейронов ганглиозного слоя, через сутки после оживления концентрация общих белков в которых составила 1,84 пг/мкм 3 (Р≤0,001), что на 19% больше значений контрольной группы. Содержание белков увеличилось на 24% и составило 535,8 пг (Р≤0,001). Выявленная своеобразная резистентность нейронов молекулярного слоя мозжечка может быть связана с их функциональными особенностями регуляторного типа, изменяющими активность клеток ганглиозного слоя: они тормозят возбудимость клеток Пуркинье.

Сравнительная цитофотометрия нейронных популяций спинномозговых ганглиев полуподземных серых крыс и лабораторных белых крыс выявила различия количественных показателей структурных белков в нейронах. У крысы белой в сравнении с крысой серой в клетках шейного отдела количество белков оказалось меньше на 22,1% (Р≤0,001), а в клетках поясничного отдела, наоборот, больше на 36,6% (Р≤0,001). Причем в шейном отделе (ШО) более значимые изменения массы белков были выявлены в цитоплазме клеток (в цитоплазме – на 22,8%; в ядре – на 18,4%); в поясничном отделе (ПО), наоборот: в ядрах клеток в цитоплазме – на 35,4%, в ядре – на 40,6% (табл. 1).

Показатели содержания структурных белков в нейронах спинномозговых ганглиев шейного и поясничного отделов крыс

Источник