Температура пульс дыхание крысы

Для измерения ректальной температуры тела животных обычный ртутный или электронный градусник, смазанный любой нераздражающей мазью или маслом, вводится через анус в прямую кишку на глубину 5- 10 мм (до «плечиков» градусника) на 3-5 мин. (пока не прекратится повышение показателя). Не забудьте изначально встряхнуть градусник до низких значений!

Для подсчета частоты пульса необходимо приложить фонендоскоп или ладонь с левой стороны на грудную клетку сразу за грудной конечностью или прижать пальцами бедренную артерию с внутренней стороны бедра в легко находимом межмышечном желобе. Удобней производить подсчет за 10 сек., затем умножить показатель на 6.

Частоту дыхания можно установить, подсчитывая число вдохов или выдохов в течение одной минуты по движению грудной клетки и живота, по движению крыльев носа или путем прикладывания ладони к грудной клетке.

Ректальная температура тела, °С (в покое)

Крупные и средние породы собак 38,3-38,5

Мелкие породы собак 38,5-38,8

Щенки до 6 мес. 38,8-39,5

Частота дыхания, вздохов в минуту (в покое)

Частота пульса, ударов в минуту (в покое)

Крупные породы собак 70-110

Средние породы собак 80-130

Мелкие породы собак 90-160

Щенки 2-6 мес. 170-200

* — может повышаться на 0,5-1°С при яйцекладке, во время линьки и полового созревания

** — в жаркое время может повышаться до 40-41°С

Источник

Частота дыхательных движений в доклинических исследованиях

М.Н. Макарова, доктор медицинских наук, директор,
Д.В. Шубин, менеджер по качеству,
В.Г. Макаров, доктор медицинских наук, профессор

НПО «Дом Фармации»,

188663, Российская Федерация, Ленинградская обл., Всеволожский район, г.п. Кузьмоловский, ул. Заводская, д. 3, к. 245

Резюме

Исследование функции внешнего дыхания у лабораторных животных — частая задача при изучении токсичности лекарственных средств, для оценки фармакологической безопасности, при изучении фармакодинамики.

При этом неизбежно возникает вопрос о нормальных значениях частоты дыхательных движений (ЧДД) у здоровых животных. Цель данного исследования — оценка частоты дыхательных движений у таких популярных для доклинических исследований видов лабораторных животных, как мышь (n=10♀, n=10♂), крыса (n=20♀, n=20♂), морская свинка (n=20♀, n=20♂), кролик (n=20♀, n=20♂), и сравнение указанных показателей с данными литературы.

У всех животных сначала измеряли ЧДД без наркотизации, затем этим животным вводили наркоз и повторно проводили измерения.

В дополнительных группах животных также, было оценено влияние приучения кроликов к процедуре измерения (на протяжении 2 нед) (n=5♀, n=5♂) и определена ЧДД у молодых кроликов (n=5♀, n=5♂).

Показатели ЧДД у мышей совпали с указанными в литературе и составили 200–283 в минуту. При этом данные, полученные на ненаркотизированных животных, оказались статистически выше.

Показатели ЧДД у крыс в наркозе и без наркоза совпали с данным литературы и составили 91–106 в минуту. У самок ЧДД при использовании наркоза оказалось статистически значимо ниже, чем у самцов.

У морских свинок показатели ЧДД полностью совпали с данными литературы (89–120 в минуту), после наркоза и у самцов и у самок ЧДД урежалась. Среди изученных видов животных этот вид наиболее подходил для снятия показаний ЧДД без использования наркоза.

При анализе данных, полученных на кроликах, мы обратили внимание на крайне низкую величину ЧДД у кроликов в покое, описанную в справочной ветеринарной литературе и в ряде экспериментальных работ приводится значение 30–80 в минуту. ПО результатам других экспериментальных работ этот показатель у интактных самок кроликов составлял 120–200 в минуту. Нам удалось зарегистрировать относительно низкие значения ЧДД только у самцов кроликов в наркозе (79±9). У кроликов самцов без наркоза этот показатель составил 302±19 в минуту, у самок без наркоза было установлено ЧДД 441±13, а в наркозе ЧДД урежается до 233±29 в минуту.

Мы предположили, что кролики, перед проведением манипуляции нуждаются в приучении к процедуре измерения, и в течение 2 нед приучали их. Также проводилось измерение ЧДД у молодых кроликов.

В результате приучения животных к процедуре измерения ЧДД снижается у самцов кроликов в сознании до 224±17, у самок кроликов — до 163±9.

Регистрация ЧДД у более молодых животных, в возрасте 8–9 мес, также влияет на показатель ЧДД; он составил 157±23 и 114±11 у самцов и самок соответственно, и был ниже, чем у животных более взрослого возраста (12–14 нед).

Проведенное исследование позволило нам сформулировать некоторые практические рекомендации по измерению ЧДД у лабораторных животных.

Введение

Исследование функции внешнего дыхания у лабораторных животных – частая задача, как при изучении токсичности лекарственных средств, для оценки фармакологической безопасности, так и при изучении фармакодинамики. Оценка функции внешнего дыхания также очень важна при доклиническом изучении ингаляционных средств.

Оценка частоты дыхательных движений (ЧДД) позволяет дифференцировать сенсорные раздражители верхних дыхательных путей и «легочные» раздражители. Такие раздражители, как аммиак, хлор и формальдегид вызывают раздражение верхних дыхательных путей, а такие, как диоксид азота и озон, вызывают раздражение легких. Раздражители верхних дыхательных путей, как правило, вызывают замедление частоты дыхания, в то время как легочные раздражители обычно увеличивают частоту дыхания и уменьшают минутный объем, обеспечивая быстрое и неглубокое дыхание [1].

При этом неизбежно возникает вопрос: каковы нормальные значения показателей функции внешнего дыхания, в частности частоты дыхательных движений у здоровых животных? ЧДД – достаточно вариативный показатель, который зависит не только от вида, пола и возраста животного.

У здоровых животных на частоту дыхания оказывают влияние многие факторы: днем ЧДД больше, чем ночью в покое; молодые животные и животные небольшого размера дышат чаще взрослых и крупных. Учащение дыхания наблюдается во время движения, кормления, пересадки животных, при контакте с незнакомыми объектами, при изменении температуры воздуха в помещении, наличии каких-либо стрессогенных воздействий. Снижение частоты дыхательных движений чаще всего наблюдается под влиянием средств для наркоза, или других лекарственных средств, способных угнетать дыхательный центр, при некоторых заболеваниях головного мозга.

Нормальные показатели ЧДД, указанные в литературных источниках, крайне противоречивы, особенно это касается кроликов и морских свинок, которые реже, чем мыши и крысы, выступают в качестве тест-систем.

Цель данного исследования – оценка частоты дыхательных движений у наиболее часто используемых в доклинических исследованиях видов лабораторных животных (мышь, крыса, морская свинка, кролик).

Материал и методы

Эксперименты были выполнены на аутбредных мышах – 10 самцов и 10 самок (возраст 8–9 нед), аутбредных крысах – 20 самцов и 20 самок (возраст 10–11 нед), морских свинках – 20 самцов и 20 самок (возраст 9–10 нед), кроликах породы Новозеландские – 25 самцов и 25 самок (возраст 12–14 нед) и 5 самцов и 5 самок (возраст 8–9 нед). Все животные получены из питомника АО НПО «Дом Фармации», Россия). Животных содержали в условиях 24-часового фоторежима (12 ч день:12 ч ночь, включение света в 8:00), при контролируемой температуре (20±2ºC) и влажности (65±10%) воздуха и свободном доступе к очищенной воде и стандартному корму (гранулированный комбикорм).

Данная научно-исследовательская работа была рассмотрена на биоэтической комиссии НПО «Дом Фармации», одобрена для проведения (№БЭК 1.58/17 от 08 августа 2017 г.), и выполнена в соответствии с рекомендациями Директивы 2010/63/EU Европейского Парламента и Совета Европейского Союза от 22 сентября 2010 года по охране животных и политикой национальных институтов здоровья США «Принципы лабораторного ухода за животными». Исследование соответствовало принципам 3 «R» (Reduction, Refinement and Replacement). Все усилия были направлены на минимизацию страданий животных и сокращение их числа для эксперимента. Эвтаназия животных дизайном исследования не была предусмотрена.

У всех животных сначала проводилось измерение ЧДД без наркотизации, в нескольких сериях, а затем эти же животные вводились в наркоз: крысы, морские свинки и кролики – Золетил 100/0,25 мл + Ксилазин/0,5 мл, мыши – Золетил 100/0,050 мл + Ксилазин/0,1 мл. После наркотизации повторно проводились измерения в нескольких сериях. После измерений животные возвращались в стоковую популяцию питомника. Кролики после измерений также возвращались в стоковую популяцию питомника и там, в комнате проживания, на протяжении 2 нед подвергались приучению к процедуре регистрации ЧДД: им навешивали датчик, помещали на рабочую поверхность и проводили регистрацию ЧДД без сохранения данных.

Для регистрации использовали регистратор PowerLab® 8/30 (ADINSTRUMENTS, Австралия) и пьезокерамический датчик для регистрации ЧДД с разъемом типа BNC для подключения к регистратору, эластичную манжету для фиксации датчика (разных типоразмеров в зависимости от вида животного). Для анализа данных использовали программное обеспечение LabChart.

Результаты и обсуждение

Полученные результаты представлены в табл. 1.

Частота дыхательных движений у различных видов животных в сравнении с данными, указанными в литературе

Источник

Сердечная недостаточность у грызунов

Что такое сердечная недостаточность?

Сердце у грызунов, как и у всех млекопитающих, четырехкамерное: два предсердия и два желудочка, отделенныaе друг от друга перегородкой и системой клапанов. Благодаря такой усовершенствованной системе циркулирующая по организму венозная и артериальная кровь не смешиваются, и перекачиваются сердцем, как насосом, в определенном направлении. Не смотря на кажущуюся изолированность, все камеры сердца работают взаимосвязано, поэтому повреждение одной из них неизбежно ведет к нарушению функционирования и других. В результате дисфункции сердце становится неспособным хорошо опорожнять венозную систему, либо уменьшает доставку крови к легким и артериальной системе. В ответ на дисфункцию в организме развивается сердечная недостаточность.

Застойная сердечная недостаточность – это состояние, когда сердце не справляется со своей насосной функцией и нарушает циркуляцию крови по сосудистой системе во всем организме. Причинами дисфункции могут быть дизритмия, кардиомиопатия (ДКМП, гипертрофическая или рестриктивная), системные инфекции, повышенный сердечный выброс, опухоли, повреждения клапанного аппарата и др.

При левожелудочковой сердечной недостаточности изменение кровообращения происходит в «малом круге». Изменения клапанного аппарата либо самой сердечной мышцы приводят к неспособности желудочка хорошо опорожняться и соответственно невозможности принять кровь, возвращающуюся от легких по легочным венам. Из-за повышенной венозной проницаемости и просачивания жидкости из капилляров в интерстиций и альвеолы может развиться отек легких, или плевральная эффузия с застоем жидкости в легких и скоплением ее в плевральной полости. Нарушается снабжение мозга кислородом, развивается гипоксия нервной системы.
При правосердечной недостаточности происходит застой крови в «большом круге» кровообращения. При этом расширяются системные вены, кровь застаивается в печени, развивается асцит с увеличением объема живота и отеками тазовых конечностей.
Многие грызуны склонны к заболеваниям дыхательной системы, особенно крысы и мыши. Осложнением этих заболеваний очень часто становится застойная сердечная недостаточность, вызванная инфекционные миокардиты, дилатационная или гипертрофическая кардиомиопатия. Рестриктивная кардиомиопатия встречается у грызунов крайне редко.
Кардиомиопатия – структурное или функциональное изменение желудочков сердца, приводящее к дилатации или дисфункции органа.

При дилатационной (застойной) кардиомиопатии (ДКМП) происходит повреждение волокон мышечной ткани миокарда. Сердечная мышца прогрессивно теряет способность к сокращению и выбрасыванию крови из сердца в кровяное русло (снижение сердечного выброса). После сокращения (систолы) в желудочках остается часть крови, которая, накапливаясь, приводит к перегрузке объемом, увеличению давления и расширению (дилатации) одного или обоих желудочков, а также способствует образованию сгустков крови — тромбов. Застойные явления могут привести к отеку легких, поражению любых систем органов, а расширение полостей сердца – к относительной клапанной недостаточности.

Гипертрофическая кардиомиопатия (ГКПМ) приводит к гипертрофии (утолщению) межжелудочковой перегородки и стенки левого желудочка без дилатации его полости. Утолщенная стенка плохо растягивается и препятствует наполнению желудочка кровью в фазу расслабления (диастолы). Поэтому левое предсердие переполняется и растягивается. Возможно развитие деформации митрального клапана. Появляются условия для застоя в легочных венах, что может привести к отеку, плевральному выпоту и тромбоэмболии в ветвях аорты. Нарушения гемодинамики могут проявляться в обоих кругах кровообращения, приводя к патологии различных систем организма.

Миокардит – очаговое или диффузное поражение миокарда, протекающее с воспалительными процессами, нарушением сократительной способности и повреждением проводящей системы сердца. Тяжелое поражение больших участков миокарда может привести к застойной сердечной недостаточности, а отек и утолщение стенок сердца – к дискинезии. Очаговые поражения приводят к нарушениям в проводящей системе и изменениям ритма. В воспалительный процесс часто вовлекаются другие структуры сердца: перикард и эндокард, а также легочная ткань, где развивается васкулит и застойные явления.

Почему заболел Ваш питомец?

Чаще всего развитие сердечной патологии может быть спровоцировано различными воспалительными процессами, инфекционными заболеваниями, вызванными бактериями, вирусами, паразитами, грибками, неоплазмами. Кроме того, к развитию сердечной недостаточности приводят различные метаболические нарушения, ожирение, интоксикации, болезни эндокринной системы.

Особую роль в развитии сердечно-легочной недостаточности у мышевидных грызунов играют респираторные инфекции, вызванные ассоциациями таких возбудителей как: Sendai Virus, Cilia-Associated Respiratory Bacillus, Rat Coronavirus, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, Mycoplasma pulmonis, Mycoplasma neurolyticum, Mycoplasma collis, Corynebacterium kutscheri, Pneumonia Virus ofMice, Mycobacterium avium-intracellulare, K Virus, Pneumocystis carinii, Chlamydia trachomatis, Chlamydia psittaci, Klebsiella pneumoniae.

Гипертрофическая кардиомиопатия чаще всего генетически обусловлена. Перечисленные выше причины не исключаются. Полиэтиологическая теория включает нарушение метаболизма кальция в миокарде, аномалии коллагена и миозина, избыток гормонов роста и катехоламинов.
Причинами развития миокардита в основном являются инфекции организма (бактериальные, вирусные, протозойные, грибковые и др.), а также токсические, аллергические и иммуноопосредованные реакции, сепсис при бактериемии.

Как определить сердечную недостаточность?
Диагностика сердечной недостаточности у грызунов включает сбор анамнеза, клинический осмотр, лабораторные исследования крови и мочи, обзорную рентгенографию в двух позициях, ЭХО-кардиографию (у крупных экземпляров).
Чаще всего в клинику обращаются с жалобами на быстрый набор веса и увеличение живота у зверька, при этом он становится сонливым, менее подвижным и быстро устает во время прогулки. Иногда наоборот беспокойство вызывает прогрессивная потеря веса, апатичность, депрессия, слабость, быстрая утомляемость животного, нарушения движения тазовых конечностей с ослаблением тонуса их мышц и похолоданием кожи.

Владельцы могут замечать патологические хрипы при дыхании зверька (воркование, шумное дыхание). Симптомы кардиомиопатии сходны с респираторными заболеваниями (верхних дыхательных путей и легких) и могут быть замаскированы ими. Тогда смерть животного может стать для Вас неожиданной.
Очень важно рассмотреть кончики пальцев и хвост – посинение, бледность и похолодание этих участков является отличительным признаком сердечно-сосудистой недостаточности!

ОСНОВНЫЕ ПРИЗНАКИ СЕРДЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ:

• быстрая утомляемость, вялость, сонливость животного
• снижение аппетита или анорексия
• сухой кашель, бронхиальные хрипы, влажное дыхание, затрудненное дыхание, одышка
• увеличение живота, отеки суставов или конечностей из-за задержки жидкости
• слабость тазовых конечностей, не связанная с болями в суставах или нарушением нервной системы
• цианоз кончиков пальцев или хвоста из-за гипоксии

Сердечная недостаточность может привести к печальным последствиям и даже внезапной смерти животного.

Прогноз у заболевания — осторожный. Выполнение рекомендаций врача и Ваша забота облегчат страдания зверька и улучшат качество его жизни. Снижение симптомов сердечно-легочной недостаточности улучшат эмоциональный статус животного и продлят его жизнь. При нарастании тяжелой симптоматики гуманнее согласиться на эвтаназию.

Как помочь больному?

Обязательно покажите Вашего питомца ветеринарному врачу!
Ветеринарный врач после осмотра животного сделает обзорную рентгенографию. К сожалению, на ранних стадия болезни изменения в сердечном силуэте не всегда заметны. Можно лишь судить об увеличивающемся кардиоторакальным индексе и усилении бронхиального рисунка. Возможно увеличение печени, селезенки, асцит.

Для уточнения диагноза могут потребоваться дополнительные анализы мочи, крови, эхокардиографическое обследование сердца (у крупных животных). После постановки диагноза врач назначает лекарственную терапию, которая может включать ряд препаратов.

Как ухаживать за больным животным?

• Ограничение физических нагрузок: уберите из клетки лестницы, ограничьте доступ на другие этажи, при выгуле не утомляйте животное.
• Уменьшить количество поваренной соли. Еда и вода должны быть в «шаговой» доступности, всегда свежие. Исключить крошащиеся корма для профилактики удушья.
• Следите за потреблением воды и увеличением веса животного (контроль задержки жидкости). Регулярно взвешивайте животное.
• Регулярно посещайте врача для коррекции курса терапии и ведите тщательное наблюдение за зверьком, отмечая улучшения или ухудшения состояния (мониторинг).

Как избежать сердечной недостаточности?

• Гигиена и удовлетворительное санитарное состояние клетки, хороший уход.
• Профилактика ожирения животного, кормление полноценным питанием с витаминами, таурином, антиоксидантами.
• Регулярная физическая нагрузка в умеренных пределах.
• Ранее выявление болезней и их качественная терапия.
• Ограничение заноса инфекций. Профилактика инфекционных заболеваний.
• Выявление наследственной патологии сердца и исключение таких животных из разведения.

Источник