Цервикальная дислокация у крыс

Альтернатива выбраковке при разведении декоративных крыс

Выбраковка — какая сложная и противоречивая тема. Неважно, какая у вас точка зрения по этому поводу, всегда найдутся те, кто ее не разделяет. В этой статье мы попытаемся убедить читателей, что вовсе необязательно выбраковывать животных, если с умом подходить к их разведению. Если вы содержите животных, неважно какого вида, всегда есть чувство вины по отношению к ним. Не усугубляйте его, убивая ни в чем неповинных братьев ваших меньших.

Начиная разведение крыс самое главное выбрать несколько окрасов и расцветок и сконцентрировать свои усилия на их совершенствовании. Окрасов не должно быть слишком много, иначе у вас на руках окажется куча животных, которым будет трудно подобрать хороших хозяев. Скрещивайте животных разных окрасов, чтобы в помете были представители и того, и другого цвета. Например, при скрещивании голубых агути с голубыми появляются малыши и той, и другой окраски, а иногда и альбиносы. При скрещивании черной самки с самцом голубого окраса в потомстве могут быть черные, голубые, норковые и белые малыши. Причем многие из них выставочного качества.

Техника разведения. Многие заводчики держат животных вместе пока не удостоверятся, что самка беременна. А затем они забывают вовремя удалить самца и бац! — нежелательное потомство. Чтобы этого не случилось, вязку надо планировать. Следите за самкой и как только увидите, что у нее течка, подсаживайте к ней самца, но не больше чем на одну ночь. Самца нельзя надолго убирать от его сотоварищей, так как они могут потом не принять его обратно. Когда самец сделает свое дело, верните его в его клетку, а самку — в ее, где она и может оставаться почти до самых родов. Старайтесь, чтобы одновременно у вас появлялось не более двух пометов и планируйте рождение малышей таким образом, чтобы они могли участвовать в шоу. Выставка — это самое удачное место, где можно найти любящих хозяев для малышей. Но все же не мешает убедиться, что они получат ту любовь, которую заслуживают и не пойдут на корм змеям.

Реализация через зоомагазины. Если у вас есть симпатичные крысы с родословной, то некоторые зоомагазины согласятся приобрести их по более высокой цене, чем та, которую обычно платят за крыс, идущих на корм рептилиям. Так что в ваших интересах продать их за цену, которая гарантирует, что ваши питомцы не погибнут в желудках рептилий. К сожалению, эти же самые магазины также принимают крыс у профессиональных поставщиков корма для змей. Как правило, эти люди не заботятся о здоровье своих животных, и многие породистые крысы могут заразиться различными болезнями и принести их в тот дом, куда они попадут.

Последнее средство. Чтобы вам не приходилось делать выбраковку, ограничьте количество животных, содержащихся у вас, а также держите у себя малышей пока не подыщите им хороший дом. Если это невозможно, то как последнее средство используйте гуманные методы эвтаназии.

У вас должны быть связи с хорошим ветеринаром, который, будучи в курсе ваших проблем, может помочь вам в этом вопросе.

Он может оказать содействие в приобретении хлороформа, или более качественного препарата, например Галотана. Более гуманно усыплять животное при помощи вещества, которое нужно вдыхать, а не инъекции.

Если ветеринар отказывается сотрудничать с вами, то следующий способ эвтаназии заключается в использовании сухого льда. Следите только, чтобы животное его не касалось. Этот метод часто используют те, кто умерщвляет крыс на корм змеям. Но для вас самым лучшим было бы найти ветеринара, который согласится вам помогать.

Негуманные методы.

Цервикальная дислокация. Не пытайтесь проделать это сами. Для крыс этот метод не подходит.

Смывание в унитаз. Какая ужасная смерть! Представьте себя на месте животного, понравилось бы вам быть утопленным?

Замораживание. Гипотермия это длительный и далеко не безболезненный процесс. Есть впечатления людей, которые на себе опробовали, что это такое. Кажется, что животное мирно умирает, но шаги, приводящие к такой смерти, являются страшно болезненными. Вспомните, что в мороз происходит с вашими голыми руками, прежде чем они потеряют чувствительность. Представьте себе, что бы вы чувствовали, если бы кто-то, кого вы любили, посадил вас в гигантский морозильник, выключил свет, запер дверь и ушел. Вообразите весь свой ужас! Какой жуткий способ умереть!

Отпускание на волю. Речь здесь идет о домашних животных. У них нет опыта выживания в естественной среде. Во-первых, животное, выросшее в клетке и оказавшееся в открытом пространстве, испытывает страх, что негуманно по отношению к нему. Во-вторых, оно может попасть на обед кошке, хищной птице или другим животным. Это тоже не слишком приятно.

Продажа крыс в качестве пищи для рептилий. Если вы выпустите крысу на улицу, у нее есть шанс избежать этой ужасной участи. Но если дать крысу на съедение змее, то ее ожидает не только смерть, но и мучительное ее ожидание, так как рептилия иногда не трогает свою потенциальную жертву в течение нескольких дней. Если мышка или крыса были выращены человеком и привыкли ему доверять, то действительно ужасно, когда человек отдает это маленькое доверчивое существо на съедение рептилии. Многие люди не верят, что животные имеют интеллект, но они могут и любить, и доверять, и бояться.И в заключение хочется сказать, что владельцам декоративных крыс и мышей следует брать пример с заводчиков собак и кошек, которые разводят животных, чтобы улучшить характеристики породы, но не допускают бесконтрольного размножения. А также, чтобы не чувствовать себя убийцами, надо больше времени тратить на то, чтобы познакомить людей с такими замечательными домашними животными как крысы и мыши, надо искать хорошие дома для них, где они получат ту заботу и любовь, которой заслуживают.

Правообладатель: портал Зооклуб
При перепечатке данной статьи активная ссылка на источник ОБЯЗАТЕЛЬНА, в противном случае, использование статьи будет рассматриваться как нарушение «Закона об авторских и смежных правах».

Источник

Цервикальная дислокация у крыс

Сообщение Anton » 19 сен 2010, 05:34

Эвтаназия (eu — хорошее и thanatos – смерть, греч.) — гуманное умерщвление животного.
Методы эвтаназии должны приводить к быстрой потере сознания, сопровождающейся остановкой сердца и дыхания, окончательной потерей функции мозга, а также быть надежными и необратимыми. Кроме того, используемая техника должна минимизировать боль и эмоциональный стресс, испытываемые животным до момента потери сознания. Выбор соответствующего метода эвтаназии в любой ситуации зависит от вида животного, навыка персонала, числа животных, и др.

Ударник (пробойник) используется для эвтаназии жвачных, лошадей, свиней, лабораторных кроликов, собак. Способ действия заключается в сотрясении и травме головного мозга. Энергию ударник получает от взрыва пороха или от сжатого воздуха, и она должна быть достаточной, чтобы обеспечить проникновение через череп животного. Чтобы вызвать внезапную потерю сознания и последующую смерть должны быть достаточно разрушены полушария головного мозга и его ствол. Для крупного рогатого скота используют многократное применение.

Читайте также:  Клещи где они зимуют

Если ударник не проникает сквозь черепную коробку, то он только оглушает животных и, в таком случае, этот метод не должен использоваться как единственное средство эвтаназии.

Преимущество. Эффективный метод эвтаназии для использования на скотобойнях, фермах, когда применение наркотических препаратов нежелательно.

Недостатки. Может вызвать эстетическое недовольство. Смерть может не наступать при плохом качестве оборудования, или если оно не используется должным образом.

Эвтаназия ударом по голове. Может быть гуманным методом эвтаназии животных с тонким черепом, если одного удара по центральным костям черепа достаточно для депрессии центральной нервной системы и разрушения тканей мозга. При правильном выполнении потеря сознания наступает быстро. Персонал, выполняющий эвтаназию таким методом должен быть обучен.

Цервикальная дислокация – метод используется давно, и если он выполняется подготовленным персоналом, считается гуманным. Этот метод применяется для эвтаназии домашней птицы, другой мелкой птицы, мышей, молодых крыс и кроликов. При эвтаназии мышей и крыс, большой и указательный пальцы помещаются с обеих сторон шеи у основания черепа или накладывают металлический прут у основания черепа.

Другой рукой делают рывок за основание хвоста или задних конечностей, производя отрыв позвоночника от черепа. При эвтаназии крольчат, голову держат в одной руке, задние конечности в другой. Для домашней птицы этот метод эвтаназии – обычный массовый метод, но он не гарантирует мгновенную потерю сознания.

Существуют данные, указывающие, что электрическая деятельность мозга сохраняется еще в течение 13 секунд после цервикальной дислокации.

Преимущества. Методика, при которой достигается достаточно быстрая потеря сознания. Ткани организма химически не загрязняются.

Недостатки. Может вызывать эстетическое недовольство у персонала. Требует технических навыков для гарантии быстрой потери сознания. Использование ограничено домашней и мелкой птицей, молодыми крысами, мышами и кроликами.

Сдавливание грудной клетки. Используется при эвтаназии мелких и среднего размера птиц, в случае, когда другие описанные методы не подходят.

Преимущества. Метод быстр, очевидно безболезнен. Позволяет использовать тело птицы для различных исследований.

Недостатки . Эстетически неприятен для наблюдателя. Неизвестна степень страданий. Следует использовать в случае невозможности применения других методов эвтаназии.

Метод эвтаназии: большой и указательный пальцы одной руки располагают под крылом птицы на ребрах, указательный палец другой руки помещают против брюшного края грудины, сильно сдавливают и удерживают до остановки сердечной деятельности и дыхания. Потеря сознания и гибель наступают быстро. Метод не подходит для эвтаназии крупных или ныряющих птиц и для животных других видов.

(Методические указания по биоэтическим правилам проведения экспериментальных исследований (выдержки))

Источник

Курс экспериментальной физиологии

Бионауки: методы Выделение ДНК из клеток (фенольный метод) Выделение ДНК из культуры клеток (высокосолевой метод) Выделение ДНК с использованием протеиназы К Гель-электрофорез ДНК Лабораторные животные в бактериологии Люминисцентная микроскопия: метод флуорохромирования Методика изолированного сердца теплокровного животно Изучение общетоксического действия фарм средств Доклиническое изучение репродуктивной токсичности Курс экспериментальной физиологии Методические указания по диагностике бешенства Исследования на пироплазмидозы животных Диагностика токсоплазмоза животных Изучение нейролептической активности лексредств Исследование мутагенности новых фарм средств Техника вскрытия лабораторных животных

по курсу экспериментальной физиологии

Экспериментальная физиология — отрасль физиологии, занимающаяся использованием, разработкой и внедрением методов экспериментального изучения функций организма.

В настоящее время эксперимент является основным эмпирическим методом познания, посредством которого физиология получает, расширяет и углубляет сведения о жизнедеятельности органов и систем организма человека и животных. Исследование по своему характеру должно дать полезные результаты на благо общества и не должно быть случайным или бесполезным.

Роль экспериментального метода в естествознании философски осмыслена родоначальником всей современной экспериментирующей науки английским философом Ф. Бэконом (1561-1626). Научный прогресс биологии в 17 веке заключался преимущественно в накоплении и систематизации материала, но главным достижением столетия все же следует считать распространение и утверждение эксперимента как основного и решающего метода познания истины. Уже в 18 веке экспериментальный метод прочно утвердился в России. Об этом свидетельствует работа первого русского гистолога A.M. Шумлянского «О строении почки» (1782). Любая научная теория прежде всего должна опираться на данные опыта. Исходя из этого F. Magendie (1783-1855) написал первое руководство по экспериментальной физиологии (1816-1817), а в 1821 году организовал первый журнал по экспериментальной физиологии. Дальнейшее совершенствование методов изучения функции внутренних органов, но уже с использованием графических методов регистрации проводилось в лаборатории К. Ludwig (1816-1895), создателя крупнейшей физиологической школы, где работали ученые из многих стран, в том числе И.М. Сеченов, И.П. Павлов и др.

Во второй половине 19 века центр основных событий в области экспериментальной физиологии постепенно перемещается в Россию. Это связано с деятельностью целой плеяды выдающихся ученых, работавших в различных городах страны. Среди них ученик F. Magendie И.Т. Глебов, который не только широко пропагандировал методы экспериментальной физиологии, но и впервые перевел на русский язык основные труды своего учителя. Киевский анатом и физиолог А.П. Вальтер в 1842 г., на 11 лет раньше С. Bernard обнаружил сосудодвигательную реакцию симпатической нервной системы. В 1842 г. В.А. Басов впервые осуществил в эксперименте создание фистулы желудка. В 1877 г. русский военный врач Н.В. Экк разработал метод выключения печени из портального кровотока.

Следует подчеркнуть, что эти и другие успехи стали возможны после того, как в 1842-1847 годах С. Long, J. Simpson, W. Morton. Ф.И. Иноземцевым и Н.И. Пироговым был разработан ингаляционный наркоз.

В биологии и медицине эксперимент прошел путь от рассечения трупов животных, через вивисекцию в донаркозную эпоху, острый опыт в период, предшествующий внедрению асептики и антисептики, до хронического наблюдения за оперированными животными, что дало в руки экспериментатора неограниченную возможность познания закономерностей жизни. В широком понимании, эксперимент можно определить как метод познания, при помощи которого в контролируемых, управляемых условиях исследуются явления действительности.

Таким образом, можно сформулировать задачи курса экспериментальной физиологии.

Разработка, усовершенствование и апробация на животных новых методов и приемов исследования функций организма.

Обеспечение в остром или хроническом эксперименте доступа к внутренним органам с целью изучения их функции.

Обучение основам хирургии и методике проведения эксперимента на животных.

В определенной степени, моделирование патологических процессов для получения более достоверной информации о структуре и функции того или иного органа.

ЭВТАНАЗИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ

Euthanasia в переводе с латинского – легкая (хорошая) смерть.

Главные критерии эвтаназии следующие:

ДОСТИЖЕНИЕ БЫСТРОЙ ПОТЕРИ СОЗНАНИЯ И СМЕРТИ

СВЕДЕНИЕ К МИНИМУМУ БЕСПОКОЙСТВА И СТРЕССА

СКОРОСТЬ И ЭФФЕКТИВНОСТЬ МЕТОДА

БЕЗОПАСНОСТЬ ДЛЯ ОПЕРАТОРА

Наиболее приемлемыми в наших условиях следует считать следующие.

Введение внутривенно или внутрибрюшинно нембутала. При этом для грызунов смертельная доза должна превышать наркозную в три раза.

Цервикальная дислокация. Применяется для некрупных грызунов с массой до 150 г.

Сотрясение мозга (оглушение) путем удара по черепу с последующей декапитацией большими ножницами.

ЛАБОРАТОРНОЕ ЗАНЯТИЕ №1

ОБЩИЕ МЕТОДЫ РАБОТЫ С ЖИВОТНЫМИ

РАБОТА 1. Фиксация животных

Овладеть различными методами фиксации животных.

Фиксация крысы рукой.

Поставьте клетку с животными на стол и снимите верхнюю крышку.

Положите правую кисть на спину животного как можно ближе к лопаткам.

Подведите большой палец под левую переднюю лапу, а остальные под правую.

Сила захвата животного должна соответствовать силе его сопротивления.

Произведите перекрест передних лап животного. Это предохранит Вас от укуса крысы.

При агрессивности животного примените раскачивания животного по широкой дуге в руке, разогнутой в локтевом суставе.

Фиксация крысы на операционном столике.

Возьмите крысу по вышеприведенной методике и держите ее вертикально, головой кверху.

Приготовьте 4 тряпичные петли-удавки.

Наложите петли на задние лапы выше голеностопных суставов, и туго затяните их.

Наложите удавки на передние лапы и затяните их выше стопы.

Удерживая животное за удавки, положите его на живот на операционный столик.

Завяжите удавки на гвоздях боковых поверхностей столика.

Фиксация лягушки на препаровальном столике.

Возьмите лягушку так, чтобы задние лапы животного лежали у Вас на ладони.

Пока один экспериментатор удерживает животное за задние лапы брюшком кверху, второй — вводит булавки в передние лапы и препаровальный столик.

Повторите процедуру для задних лап.

Фиксация кролика в станке.

Возьмите кролика и посадите его в станок головой по направлению к узкому концу станка.

Оденьте на шею металлический ошейник и затяните его болты.

Возьмите сетку и оденьте ее на выступающие шпильки станка.

Переноска крыс и мышей осуществляется либо за хвост, либо хваткой под брюшко. Последнее является более предпочтительным. Переноска кролика осуществляется двумя руками: одной за кожу шеи, а другой за кожу спины. Нельзя переносить кролика хваткой за уши.

РАБОТА 2. Маркировка животных

Цель работы Освоить методику маркировки крыс.

Рис.1. Схема маркировки крысы с помощью красителя.

Фиксируйте животное одним из перечисленных способов.

Возьмите краситель и кисточку.

Промаркируйте крысу в соответствии

с присвоенным номером.

Краска наносится на шерсть до корня волос.

Схема маркировки крысы с помощью красителя (рис.1):

плечо правой передней лапы — 2,

бедро правой задней лапы — 4,

основание хвоста — 5,

бедро левой задней лапы – 6,

плечо левой передней лапы — 8,

середина спины — 10,

середина спины и лоб — 11,

середина спины и плечо правой передней лапы — 12 и т. д.

РАБОТА 3. Методы введения растворов

Овладеть различными методами введения растворов в организм крысы. Методика работы

Введение растворов через рот (per os) no обычной методике.

Возьмите шприц на 10 мл и наберите 1 мл физиологического раствора.

Рукой зафиксируйте крысу вертикально.

Наденьте на шприц иглу с напаянной булавой.

Введите иглу в полость рта крысы и осторожно продвигайте ее по задней стенке глотки в пищевод на глубину 5-7 см.

Введите раствор в желудок животному.

Остановите введение в случае поперхивания животного или кашля.

Введение растворов per os no Г. Селье.

Повторите п. п. 1 и 2 предыдущей работы.

Наденьте на канюлю шприца гибкий пластиковый катетер

Окуните его в подсолнечное масло и, используя естественное положение головы крысы, введите его в полость желудка по предыдущей методике.

Повторите п.п.5 и 6.

. В желудок крысам вводится не более 1.5 мл жидкости.

Введение растворов через прямую кишку (per rectum ).

Возьмите шприц и наберите 1 мл физиологического раствора.

Наденьте на канюлю шприца пластиковый катетер длиной 6-7 см.

Возьмите крысу и посадите ее на стол, на лапы, фиксируя ее рукой.

Поднимите хвост и найдите anus.

Введите катетер на глубину 5-6 см и введите раствор.

. Per rectum вводится не более 1 мл раствора.

Парентеральное (минуя желудочно-кишечный тракт)

Накожное введение, (н/к)

Возьмите крысу и выстригите шерсть на правом боку на площади примерно 2 см2.

Острым концом скальпеля произведите скарификацию (царапины) на коже.

Нанесите на поврежденную кожу несколько капель физиологического раствора.

Внутрикожное введение, (в/к)

Возьмите крысу и выстригите шерсть на спине на площади примерно 1 см2.

В инсулиновый шприц наберите 0,5 мл физиологического раствор

Удерживая крысу одной рукой другой введите иглу внутрикожно, примерно на глубину 0,5 мм.

Введите 0,01 мл раствора так, чтобы на коже образовалось шарообразное вздутие.

. Внутрикожно водится не более 0,04 мл раствора.

Подкожное ведение, (п/к)

Наберите в шприц 5 мл раствора.

На спине, на боку или на бедре задней лапы большим и указательным пальцами левой руки возьмите в складку кожу животного.

В основание складки и параллельно ей введите иглу и выпустите из шприца 2-3 мл раствора.

. Взрослой крысе подкожно вводится до 10 мл раствора.

Внутримышечное введение, (в/м)

Наберите в шприц 1 мл физиологического раствора.

Левой рукой вытянув заднюю лапу, под углом 45° введите иглу в мышцы бедра и введите раствор.

. Допускается введение в мышцы до 5 мл раствора.

Внутрибрюишнное введение, (в/б)

Наберите в шприц 1 мл физиологического раствора.

Пусть помощник удерживает крысу в вертикальном положении одной рукой за кожу шеи, а другой за хвост.

Мысленно проведите линию от середины паховой складки до середины расстояния от лобка до мечевидного отростка крысы.

Экспериментатор в среднюю точку соединительной линии вводит под прямым углом к плоскости живота иглу до ощущения «проваливания» в брюшную полость.

. Внутрибрюшинно вводится до 5 мл раствора.

Внутривенное введение, (в/в)

Посадите кролика в станок.

Выстригите шерсть на наружной поверхности уха кролика.

Наберите в шприц 1 мл физиологического раствора.

Интенсивно помассируйте ухо кролика до появления выраженности сосудов.

Под острым углом введите иглу в просвет вены краевой зоны уха.

. Внутривенно вводится до 20 мл раствора кроликам и до 5 мл крысам

РАБОТА 4. Эвтаназия мелких лабораторных животных

Познакомиться с эвтаназией мелких лабораторных животных.

Возьмите крысу в левую руку, а в правую молоток средних размеров.

Нанесите удар средней силы в область затылка с целью «оглушения» животного.

Быстро возьмите большие ножницы и над раковиной произведите декапитацию (отсечение головы).

После декапитации держите краниальный конец крысы как можно ниже над раковиной с тем, чтобы слить кровь из туловища.

Эвтаназия путем помещения животных в закрытый сосуд с большой концентрацией медицинского эфира с точки зрения биоэтики считается недопустимой.

Каждый этап выполнения лабораторной работы обязательно показывается преподавателю, ведущему занятие для контроля за правильностью ее выполнения.

ЛАБОРАТОРНОЕ ЗАНЯТИЕ №2

ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ, УЗЛЫ, ШВЫ

РАБОТА 1. Основные хирургические инструменты

Освоить методы удержания и пользования хирургическими инструментами.

ИНСТРУМЕНТЫ ДЛЯ РАЗЪЕДИНЕНИЯ ТКАНЕЙ.

Скальпели (рис. 2.):

Возьмите скальпель в кисть в позицию писчего пера (рис. 3).

Поставьте его острие на модель кожи (х/б ткань).

Сделайте быстрый разрез с минимумом давления и максимумом тяги.

Разрез должен быть достаточно глубоким, с ровным краями.

Рис. 2. Виды скальпелей.

Рис. 3. Способы удержания скальпелей.

а –- нож в позиции писчего пера;

б – нож в позиции столового ножа,

в – кисть в позиции смычка

Хирургические ножницы (рис. 4.):

Ощущение положения и контроля ножниц в движении достигается следующим образом (рис. 5).

Ногтевая фаланга 4-го пальца заводится в правое кольцо ножниц.

3-ий палец ложится на это же кольцо сверху.

2-ой палец ложится на замок (или винт), скрепляющий бранши ножниц.

Ногтевая фаланга первого пальца заводится в левое кольцо.

Сделайте разрез х/б ткани.

Рис. 4. Виды ножниц.

а – ножницы, изогнутые по оси (Рихтера); б – ножницы прямые остроконечные;

в – ножницы прямые тупоконечные; г – ножницы, изогнутые по плоскости (Купера)

Рис. 5. Положение пальцев при пользовании ножницами.

Примечание: Ножницы более подходят для рассечения тонкослойных образований. Разрез делается быстро и четко. Вялое кромсание приводит к излишней травматизации, образованию лоскутов лишенных питания и, как следствие, ухудшению заживления послеоперационных ран.

ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИГЛЫ И ИГЛОДЕРЖАТЕЛИ (рис.6)

Взять иглу пинцетом.

Захватить иглу иглодержателем так, чтобы не менее 2/3 иглы-(считая от острия) были свободными.

Положите иглодержатель в кисть так, чтобы 2-ой палец лежал на замке иглодержателя (рис. 7).

Приготовьте хирургическую нить.

Поместите ее по длинной оси иглодержателя, зажимая между 1-ой и 2-ой фалангами 3-его пальца.

Проведите нить под длинным концом иглы, затем между концом иглодержателя и телом иглы. Длина остатка нити в игле должна составлять около 1,5 см.

В качестве модели возьмите кусочек х/б ткани и соедините её края.

Вкалывая иглу, ее ставят перпендикулярно поверхности так, чтобы потом вращательным движением кисти из положения пронации в положение супинации продвигать ее в ткани.

Для подхватывания иглы используется анатомический пинцет.

Рис. 6. Иглодержатели и хирургические иглы.

1 — иглодержатель с изогнутыми ручками (Матье); 2 — иглодержатель Троянова:

3 — иглодержатель с прямыми кольцевыми ручками (Хегара); аа — поперечное сечение режущей хирургической иглы; бб -поперечное сечение круглой хирургической иглы;

в — ушко хирургической иглы.

Рис. 7. Положение кисти при пользовании иглодержателем.

а — кисть в положении пронации; б — кисть в положении супинации.

Пинцет удерживается с одной стороны большим пальцем, а с другой -указательным и третьим (т.е. в виде писчего пера).

В этом случае пинцет является как бы продолжением пальцев и обеспечивается высокая точность и чувствительность в движении (рис. 9).

Рис. 8. Виды пинцетов.

Рис. 9. Неправильное (а) и правильное (б) держание пинцета.

КРОВООСТАНАВЛИВАЮЩИЕ ЗАЖИМЫ (рис. 10).

Их удержание и работа производится также как и у ножниц. При захватывании сосудов нужно стремиться чтобы в зажим попало по возможности меньше окружающих тканей. Попробуйте сделать это на краешке х/б ткани.

Рис. 10. Виды кровоостанавливающих зажимов.

а – зажим с овальными губками (Пеана); б – зажим зубчатый (Кохера);

в – зажим с длинными губками без зубцов (Бильрота); г – зажим типа «москит».

РАБОТА 2. Хирургические швы и узлы

Освоить основные хирургические узлы и способы их вязания.

Примечание: для этой работы используйте металлический цилиндр и кусочек хлопчатобумажной ткани.

Возьмите иглодержатель с иглой и заправленной нитью.

Произведите вкол и выкол на одинаковом расстоянии от краев разреза

Затяните хирургический узел до соприкосновения краев раны так, чтобы они не подвертывались и плотно соприкасались по всей толщине соединяемой поверхности.

Следите чтобы узлы располагались не на линии разреза, а сбоку на одной стороне.

Швы накладываются на расстоянии 1-2 см друг от друга.

Возьмите длинную нить и заведите ее в иглу.

Сделайте вкол и выкол и завяжите узел.

В дальнейшем, делая вколы и выколы, произведите ушивание раны.

Завяжите узел после ушивания.

Произведите вкол и выкол и завяжите узел.

Произведите вкол и выкол и на этой же стороне вкол и выкол на противоположной.

После ушивания раны завяжите узел. Для этого в одну руку возьмите конец нити, а в другую сложенную вдвое нить из последнего шва.

Рис. 11. Виды швов.

а – узловатый шов;

б – непрерывный шов;

в – шов Мультаиовского;

г – одиночный матрацный шов;

д – непрерывный матрацный шов.

ЛАБОРАТОРНОЕ ЗАНЯТИЕ №3

АНЕСТЕЗИОЛОГИЯ. ПРОБНАЯ ЛАПАРАТОМИЯ

РАБОТА 1. Расчёт дозы наркотического вещества для

Определить дозу наркозного вещества и стадии наркоза.

Возьмите крысу и определите ее массу.

В соответствии с приведенными в конце этого занятия данными рассчитайте дозу гексенала.

Разведите наркозное вещество, введите крысе, отметьте время его введения.

Запишите время наступления и продолжительности каждой из стадий наркоза.

Запишите данные обследования животных в таблицу, отмечая характер дыхания, подвижность, реакцию зрачков на свет, роговичный рефлекс, болевую чувствительность, акт дефекации и мочеиспускания.

Сделайте вывод из полученных результатов.

РАБОТА 2. Расчёт эффективной дозы эфира для общей анастезии

Определить дозу эфира необходимую для эффективной дачи наркоза крысе.

Измерьте объем эксикатора.

Посадите крысу в эксикатор.

Шприцем введите в эксикатор 3 мл эфира и отметьте время от момента введения до момента наступления наркотического сна.

Повторите процедуру с 5 и 10 мл эфира.

Выберите наиболее эффективную дозу, произведя соответствующие расчеты.

РАБОТА 3. Пробная лапаратомия

Освоить методику лапаратомии у крыс.

На операционном столике зафиксируйте на спине наркотизированную крысу из предыдущей работы.

Ножницами с изогнутыми браншами выстригите шерсть по срединной линии живота.

Дважды обработайте кожу раствором йода.

Вымойте дважды руки теплой водой и обработайте их 70% спиртом.

Возьмите скальпель и одним движением произведите разрез кожи от мечевидного отростка до лонного сочленения.

Рассеките скальпелем мышцы и брюшину.

Осмотрите брюшную полость, обращая внимание на взаиморасположение органов.

Послойно ушейте брюшную полость, накладывая кетгут на мышцы и брюшину непрерывным швом, а на кожу — шелк прерывистым узловатым швом. Обработайте ушитую рану йодом.

Освободите животное и положите его в клетку.

Проследите за наличием в клетке воды, пищи, опилок.

На 8-ой день после операции снимите швы после их повторной обработки раствором йода.

Примечание. В ходе операции необходимо следить за постоянным поддержанием III-ей стадии наркоза. Это осуществляется путем наложения ваты, смоченной эфиром, на мордочку животного.

Таблица. Дозы наркотических веществ для белых крыс

Источник

Оцените статью
Избавляемся от вредителей